Artículo cientíﬁco / Scientiﬁc paper

BIOTECNOLOGÍA

pISSN:1390-3799; eISSN:1390-8596

https://doi.org/10.17163/lgr.n41.2025.07

IDENTIFICACIÓN DE UN PÉPTIDO ANTIMICROBIANO DE

CHAMAEMELUM NOBILE

IDENTIFICATION OF AN ANTIMICROBIAL PEPTIDE FROM CHAMAEMELUM

NOBILE

Diana Daniela Portela Dussán1, Sandra Mónica Estupiñan Torres2y Silvio

Alejandro Lopez-Pazos1*

1Faculty of Sciences, Universidad Antonio Nariño, Carrera 3 Este 47A-15, Bogotá D.C., Colombia.

2Faculty of Health Sciences, Universidad Colegio Mayor de Cundinamarca, Calle 28 No. 5B-02 Bogotá D.C., Colombia.

*Autor para correspondencia: alejandrolopezpazos@uan.edu.co

Manuscrito recibido el 14 de julio de 2023. Aceptado, tras revisión, el 02 de abril de 2024. Publicado el 1 de marzo de 2025.

Resumen

Chamaemelum nobile, o manzanilla romana, es una planta que contiene propiedades antiinﬂamatorias y antimicrobia-

nas. Los péptidos antimicrobianos (AMP) son parte del sistema de defensa de las plantas, que incluye a los péptidos de

transferencia de lípidos (LPT). Nuestro objetivo es identiﬁcar una proteína relacionada con LTP de C. nobile (cnLTP).

Se realizó la PCR sobre el ADN de C. nobile para la identiﬁcación del gen cnLTP; se utilizó bioinformática para su

caracterización, y una prueba de sensibilidad contra Rhizoctonia solani. cnLTP tiene 99 aminoácidos, 9,8 kDa, punto

isoeléctrico de 9,39, 33 residuos alifáticos, índice alifático de 85, hidropaticidad de 0,127, cuatro hélices alfa y cuatro

puentes disulfuro. Se encontró que el ﬂuido apoplásico de C. nobile (1 µg/mL) inhibe el desarrollo de R. solani. Este

estudio contribuye al conocimiento de un LTP novedoso y no caracterizado, utilizando enfoques in silico y experimen-

tales.

Palabras clave: Manzanilla romana, péptido antimicrobiano, proteína de transferencia de lípidos, Rhizoctonia solani.

Abstract

Chamaemelum nobile, or Roman chamomile, is a plant containing anti-inﬂammatory and antimicrobial properties. Anti-

microbial peptides (AMPs) are part of the plant defense system including lipid transfer peptides (LPTs). Our objective

is to identify a LTP-related protein from C. nobile (cnLTP). PCR was performed on C. nobile DNA for identifying cnLTP

gene. Bioinformatics was used for their characterization, and a sensitivity test was carried out on Rhizoctonia solani.

cnLTP has 99 amino acids, 9.8 kDa, isoelectric point of 9.39, 33 aliphatic residues, aliphatic index of 85, hydropathicity

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Identiﬁcación de un péptido antimicrobiano de Chamaemelum nobile

of 0.127, four alpha-helices and four disulﬁde bridges. An inhibitory activity of apoplastic ﬂuid of C. nobile was deter-

mined at 1 µg/mL on R. solani. This study contributes in the knowledge of a novel and non-characterized LTP using

in silico and experimental related approaches.

Keywords: Roman chamomile, Antimicrobial peptide, Lipid transfer protein, Rhizoctonia solani.

Forma sugerida de citar: Portela Dussán, D., Estupiñan Torres, S. y Lopez-Pazos, S. (2025). Identiﬁcación de un

péptido antimicrobiano de Chamaemelum nobile. La Granja: Revista de Ciencias de la

Vida. Vol. 41(1):118-126. https://doi.org/10.17163/lgr.n41.2025.07.

IDs Orcid:

Diana Daniela Portela Dussán: https://orcid.org/0000-0003-2949-7033

Sandra Mónica Estupiñan Torres: https://orcid.org/0000-0002-6937-4567

Silvio Alejandro Lopez-Pazos: https://orcid.org/0000-0002-3682-4162

LAGRANJA:Revista de Ciencias de la Vida 41(1) 2025:118-126.

Artículo cientíﬁco/Scientiﬁc paper

BIOTECNOLOGÍA Portela Dussán, D., Estupiñan Torres, S. y Lopez-Pazos, S.

1 Introducción

Las proteínas relacionadas con la patogénesis (PR)

se pueden detectar a nivel basal en los tejidos sanos

de las plantas, pero aumentan su presencia ante el

ataque de patógenos. La activación de las PR puede

comenzar solo después de una fase de interacción

de la planta-patógeno, a partir del reconocimiento

de patrones moleculares asociados con microorga-

nismos (PAMPs) por receptores de reconocimiento

de estos patrones (PRR) presentes en la membrana

celular de las plantas, o mediante el reconocimien-

to de elicitores como proteínas con dominios de

unión a nucleótidos y repeticiones ricas en leucina

(NB-LRR). La concentración de PRs aumenta con

la transducción de señales químicas como el ácido

salicílico, el etileno y el ácido jasmónico durante la

primera etapa de activación de los mecanismos de

defensa (Zhou and Zhang, 2020; Boyd et al., 2013).

Los péptidos antimicrobianos (AMPs) son una par-

te de las PRs, tienen un peso molecular menor a

10 kDa y una actividad antimicrobiana in vitro. Los

AMPs se producen por microorganismos, animales

y plantas como mecanismo de defensa contra los

patógenos (Bin Hafeez et al., 2021).

Los AMPs tienen menos de 200 aminoácidos, se

expresan constitutivamente y se inducen en tejidos

susceptibles como primordios foliares, estomas y

epidermis. Por ejemplo, en Nicotiana megalosiphon

se evidenció que tras la inoculación con Peronospo-

ra hyoscyami sp. tabacina expresó en hojas un gen

de defensina, y en Brassica oleracea inoculada con

Xanthomonas campestris pv. campestris se expresaron

genes de AMPs en tallo y hojas; también se obser-

vó que el pimiento inoculado con X. campestris pv.

vesicatoria provocó una alta transcripción en el gen

CaAMP1, y su expresión generó tolerancia a Phy-

tophthora sojae (Sharma et al., 2022; Niu et al., 2020;

Jiang et al., 2011; Portieles et al., 2010). Se ha eviden-

ciado que los AMPs catiónicos como las tioninas al-

fa/beta, defensinas y los péptidos de transferencia

de lípidos (LTPs) interactúan con grupos aniónicos

de la bicapa fosfolipídica en los microorganismos.

También se forman micelas que permiten el ﬂujo de

iones hacia el espacio extracelular con descompen-

sación osmótica, lisis celular y muerte (Kovaleva

et al., 2020).

Los AMPs aniónicos, como los ciclotidos, in-

teractúan con la membrana citoplasmática de los

patógenos a través de fuerzas electrostáticas en-

tre los residuos polares de un AMP y las cabezas

hidrofílicas de los fosfolípidos, mediante el recono-

cimiento de la columna vertebral quiral del glice-

rol. La fuerza electrostática de esta unión compleja

está determinada por una interacción iónica entre

el grupo amonio de la fosfatidiletanolamina y el

grupo carboxilo de un glutamato conservado del

bucle 1 del AMP (Venkatesan and Roy, 2023; Troei-

ra Henriques and Craik, 2017). La permeabilización

sufrida por la membrana citoplasmática en la inter-

acción microorganismo/AMP no es del todo clara.

Se han descrito cuatro posibles mecanismos: (i) hé-

lices peptídicas que forman un haz en la membrana

con un lumen central, (ii) los AMPs se acumulan en

la superﬁcie de la bicapa lipídica interactuando con

las cabezas hidrofílicas de los fosfolípidos, cubrien-

do la membrana como una alfombra y causando la

desorganización de la bicapa lipídica, (iii) los AMPs

se insertan en la membrana, formando un poro e

induciendo una ﬂexión continua de la monocapa

lipídica, lo que provoca que la superﬁcie hidrófo-

ba de la membrana se oriente hacia el exterior y la

superﬁcie hidrofílica hacia el interior, formando un

canal acuoso con pérdida de polaridad, (iv) el AMP

provoca un desplazamiento competitivo de Ca2+ y

Mg2+ (Boparai and Sharma, 2020; Li et al., 2012).

La manzanilla romana Chamaemelum nobile (L.)

es una hierba perenne aromática, con un tallo rami-

ﬁcado y alargado que alcanza una altura de entre

20 y 30 cm, que sostiene una cabeza ﬂoral formada

por hojas blancas con lígulas segmentadas y folíolos

bien deﬁnidos. Crece en zonas templadas, es adap-

table y se utiliza en varios tipos de suelos ácidos con

suﬁciente agua. C. nobile. Contiene entre un 0,24%

y 1,9% de aceites volátiles y alrededor de 120 meta-

bolitos secundarios, incluidos ﬂavonoides (querce-

tina, luteolina, apigenina, patuletina), alfa-bisabolol

y óxidos de bisabolol A y B, azulenos (camazuleno),

monoterpenos (alfa-pineno), sesquiterpenos (farne-

seno), cumarinas (herniarina y umbeliferona). Su

composición le otorga posibles propiedades tera-

péuticas reconocidas (antiinﬂamatorias, espasmolí-

ticas, sedantes, antioxidantes, anticoagulantes, anti-

hiperlipidémicas, repelentes y antimicrobianas).

La producción mundial de C. nobile supera las

1000 toneladas/año. Se utilizan 800 kg de tallo ﬂo-

ral/ha para producir entre 0,8% y 1,5% de aceites

esenciales. De igual forma, se pueden obtener com-

120 LAGRANJA:Revista de Ciencias de la Vida 41(1) 2025:118-126.

Identiﬁcación de un péptido antimicrobiano de Chamaemelum nobile

puestos fenólicos y alcanos de las semillas, frutos o

raíces. Los aceites de C. nobile son efectivos in vitro

contra Staphylococcus aureus (0,1 mg/mL), Escheri-

chia coli (0,1 mg/mL), Bacillus subtilis (0,05 mg/mL),

Pseudomonas aeruginosa (12,5 y 25 mg/mL), P. tolaa-

sii (300 mg/mL), Candida albicans (0,1 mg/mL), y

hongos como Aspergillus candidus,Penicillium sp.,

Fusarium culmorum yA. niger (900 mg/mL) (Ghaedi

et al., 2015; Kazemian et al., 2015; Srivastava et al.,

2010; Saderi et al., 2005).

El objetivo de esta investigación fue encontrar

un AMP catiónico de C. nobile (denominado cnLTP)

enfocado en identiﬁcar la secuencia de ADN de un

LTP. Los parámetros a utilizar fueron las pruebas

bioinformáticas y moleculares, y la evaluación so-

bre Rhizoctonia solani, que es un patógeno de la pa-

pa.

2 Materiales y Métodos

2.1 Cultivo de C. nobile

Se utilizaron semillas comerciales de manzanilla ro-

mana en un medio de propagación (Mezcla de Sales

y Vitaminas de Murashige y Skoog (MS) suplemen-

tado con 20 mg/L de sacarosa, 0,1 mg/L de bencila-

minopurina (BAP), 0,5 mg/L de ácido naftalenoacé-

tico (ANA), 0,25 mg/L de ácido giberélico (GA3)).

Las semillas se mantuvieron en condiciones de tem-

peratura constante (20 ◦C) y humedad (70%).

2.2 PCR para la detección del gen cnLTP

Para extraer el ADN, se sumergieron las hojas de

C. nobile de plántulas in vitro en un tubo que conte-

nía tampón de lisis (200 mM Tris HCl pH 7,5, 250

mM NaCl, 25 mM EDTA, 0,5% SDS), solución de

precipitación (isopropanol) y tampón TE 1X como

diluyente (Edwards et al., 1991). Se realizó PCR uti-

lizando 1X tampón PCR, 2,5 mM de MgCl2, 0,2 mM

de dNTPs, 0,4 µM de cada cebador y 0,2 U de Taq

ADN polimerasa. Las condiciones del ciclo térmico

fueron: una fase de desnaturalización a 95 ◦C du-

rante 5 min, seguida de 30 ciclos consistentes en

desnaturalización (95 ◦C por 1 min), alineamiento

(50 ◦C por 1 min), extensión (72 ◦C por 1 min) y una

extensión ﬁnal (72 ◦C por 5 min).

Los productos de PCR se determinaron me-

diante electroforesis en gel de agarosa al 1,2%

y se secuenciaron (Macrogen, EE. UU.). Los ce-

badores directo e inverso para LTP fueron 5’-

GACTGCTCAACGGTTCAGTAAAGTTGA-3’ y 5’-

TCAACTTTACTGAACCGTTGAGCAGTC-3’, res-

pectivamente (Rojas, 2010). Los datos de la se-

cuencia obtenida se depositaron en GenBank (ID:

MT294300).

2.3 Caracterización in silico de cnLTP

Se empleó la secuencia de nucleótidos de cnLTP

para obtener su secuencia de aminoácidos, utili-

zando la herramienta "Translate"del servidor Ex-

pasy (http://web.expasy.org/translate/) (Artimo

et al., 2012). Para prever el posible rol del AMP,

se realizó un análisis comparativo usando BLASTp

(http://www.ncbi.nlm.nih.gov/BLASTp/) (Shah

et al., 2018) para encontrar secuencias similares

en bases de datos de proteínas. La anotación bio-

química de cnLTP se realizó usando ProtParam

(https://web.expasy.org/protparam/) (Artimo

et al., 2012). El modelado por homología de cnLTP

se llevó a cabo utilizando el servidor I-TASSER

(https://zhanglab.ccmb.med.umich.edu/I-TASSER

/) (Zhang, 2009). El mejor resultado obtenido en la

anotación de cnLTP fue para un LTP de Nicotia-

na tabacum, que se utilizó como plantilla (PDB ID:

1T12A; 73% de identidad, 91% de cobertura de con-

sulta; valor E de 7e-43). Las ﬁguras se realizaron con

DeepView (https://spdbv.vital-it.ch/) (Johansson

et al., 2012).

2.4 Prueba de susceptibilidad de R. solani

utilizando ﬂuido apoplástico de C. no-

bile

El ﬂuido de lavado apoplástico (AWF) de C. nobile

se extrajo de hojas (Butt et al., 2019; Gentzel et al.,

2019). Primero, se lavaron las hojas maduras (∼1g)

con agua destilada estéril para eliminar los exuda-

dos citoplasmáticos de las células dañadas, y luego

se determinó el peso fresco. Los segmentos de hojas

se inﬁltraron en un frasco que contenía 250 mL de

agua destilada estéril a 4 ◦C y presión de vacío de

20 kPa, lo que permite que el aire escape y facilite el

ﬂujo de agua en el espacio intercelular, lavando las

moléculas de AWF. Una vez completado el método

de presión, el frasco se agitó lentamente hasta libe-

rar aire y vacío para reducir la lisis celular y evitar

la contaminación citoplasmática.

LAGRANJA:Revista de Ciencias de la Vida 41(1) 2025:118-126.

Artículo cientíﬁco/Scientiﬁc paper

BIOTECNOLOGÍA Portela Dussán, D., Estupiñan Torres, S. y Lopez-Pazos, S.

La presión de vacío se repitió hasta que las hojas

quedaron completamente inﬁltradas, volviéndose

de color oscuro. El AWF se recuperó de los segmen-

tos de hojas secados con papel de laboratorio suave

y envueltos en paraﬁlm; luego, se centrifugaron a

4◦C, 10,000 rpm durante 10 min. Se utilizó el en-

sayo de Bradford para medir la concentración de

proteínas (Bradford, 1976). La evaluación de la ca-

lidad de los péptidos de AWF se realizó mediante

tricina-SDS-PAGE. Se completó la evaluación pre-

liminar de la actividad biológica del AWF sobre R.

solani utilizando 10 cm del micelio que se cultivó en

medio PDA, y se añadieron carriles de AWF a cada

lado, extendiéndose más allá de los extremos de la

estructura fúngica existente en una base decreciente

gradual, utilizando concentraciones de 0,1 µg/mL a

1µg/mL.

Se utilizó una suspensión de la cepa PAO1 de

P. aeruginosa como control positivo (control negati-

vo: agua en lugar de AWF como muestra, datos no

mostrados). El R. solani se incubó durante cinco días

a 30 ◦C. Se midió el efecto de las proteínas del AWF

en R. solani mediante el desplazamiento del micelio

en la placa de Petri.

3 Resultados

Las semillas de manzanilla romana se cultivaron en

un medio MS suplementado con hormonas de creci-

miento con el objetivo de inducir la germinación y el

crecimiento de plántulas adecuadas para la extrac-

ción de ADN genómico. La PCR identiﬁcó un pro-

ducto de aproximadamente 300 pb, que pudo ser

determinado mediante secuenciación. Esta secuen-

cia se comparó con las entradas de nucleótidos re-

gistradas en la base de datos GenBank utilizando

el programa BLAST (Shah et al., 2018). La secuen-

cia de ADN (297 pb) mostró una estrecha relación

con los LTPs de tomate (identidad 96%, valor E 4e-

57, cobertura 96%, NCBI). Este conocimiento, a su

vez, permitió deducir la secuencia del cnLTP (99 re-

siduos) que codiﬁca el ADN y que contiene única-

mente secuencias de ADN codiﬁcante para el pép-

tido maduro, sin señal peptídica ni sitio de poliade-

nilación. La secuencia de aminoácidos en el cnLTP

y, por lo tanto, la función de la proteína, está deter-

minada por ocho residuos de C que están enlazados

en cuatro puentes disulfuro (Figura 1A).

Figura 1. Estructura de cnLTP. A. Alineación de dos LTPs de tomate con cnLTP, asociada con propiedades ﬁsicoquímicas según

Clustal Omega (Sievers and Higgins, 2014): en rojo, aminoácidos pequeños e hidrofóbicos (junto con aromáticos -Y); en azul,

ácidos; en magenta, básicos – H; en verde, hidroxilo, sulfhidrilo, amina y G; en gris, aminoácidos e iminoácidos inusuales. B.

Modelo 3D de cnLTP, la ﬂecha negra indica el terminal N, la ﬂecha blanca señala el terminal C. Las hélices están indicadas y

coloreadas en negro.

El peso molecular teórico del cnLTP es de 9,8

kDa y su punto isoeléctrico es de 9,39. Además, el

péptido está compuesto por 33 residuos alifáticos

(A, V, I y L), el índice alifático del cnLTP es 85, el

cual determina el volumen ocupado por cadenas

laterales alifáticas, y contiene 12 residuos cargados

positivamente debido a la conformación catiónica

del cnLTP a pH neutro, y tres residuos cargados ne-

gativamente. La hidropatía es 0,127, lo que indica la

presencia de una cavidad hidrofóbica donde tam-

122 LAGRANJA:Revista de Ciencias de la Vida 41(1) 2025:118-126.

Identiﬁcación de un péptido antimicrobiano de Chamaemelum nobile

bién ocurre la interacción con lípidos. El cnLTP está

formado por cuatro alfa-hélices. La primera hélice

(P2-Q24) presenta una estructura H1A (P2-S5) for-

mada por dos pliegues en His3 y Gly4, y H1B (P18-

L23) formada por cuatro pliegues en Q11, G15, C19

y Y22. La segunda hélice H2 (C32-L39) contiene tres

pliegues en R34, G35 y L39. La tercera hélice H3

(P46-A62) comprende siete pliegues en D48, K50,

A52, T54, L56, K57, A59 y N61. La cuarta hélice H4

(L68-C78) encierra pliegues en G69, I74 y S76. Las

cuatro alfa-hélices están conectadas por tres bucles

cortos, L1 (G25-G31), L2 (L40-T45) y L3 (I63-N67)

(Figura 1B). El cnLTP está estabilizado por cuatro

puentes disulfuro formados entre C9-C33, C19-C55,

C32-C78 y C53-C92, los cuales se calcularon me-

diante DISULFIND (http://disulﬁnd.dsi.uniﬁ.it/)

(Ceroni et al., 2006). El cnLTP contiene 50 residuos

hidrofóbicos: A, V, L, I, P, F y C, estando la mayoría

en el interior del péptido, formando una cavidad

hidrofóbica, lo que es característico de esta familia

de AMPs (Li et al., 2012).

La evaluación biológica del ﬂuido apoplástico

de C. nobile se llevó a cabo teniendo en cuenta la

concentración de proteínas (2,37 mg/mL), así como

la presencia intrínseca de péptidos de bajo peso mo-

lecular, de aproximadamente 10 kDa, lo que indica-

ría que son LTPs (Figura 2A). Las pruebas de an-

tagonismo indicaron un efecto inhibitorio sobre R.

solani a una concentración de 1 µg/mL (Figuras 2B-

2C).

Figura 2. Bioensayo del AWF de C. nobile en R. solani. A. Tricina SDS-PAGE mostró una banda de 10 kDa relacionada con

LTPs en el AWF de C. nobile (líneas 1 y 2, M es el marcador de peso molecular). B. Control positivo que contiene carriles con

suspensión de la cepa P. aeruginosa PAO1 (ﬂechas negras). C. Micelio de R. solani con carriles de AWF de C. nobile a cada lado,

que se fueron extendiendo gradualmente en el medio; los cuadros muestran las áreas de inhibición.

4 Discusión

Los péptidos permiten que las bacterias evadan la

defensa del huésped y se proliferen al impedir la

señalización celular, la migración celular e incluso

pueden matar directamente las células de respuesta.

Los péptidos tienen mecanismos de daño complejos

sobre las membranas celulares (ruptura), la síntesis

de proteínas (inhibición), los segundos mensajeros

(activación) o la respuesta de defensa (activación)

(Yang and Yousef, 2018). Hasta ahora, se ha suge-

rido que una caracterización bioquímica especíﬁca

enfocada en la actividad biológica especíﬁca o un

diseño asistido por computadora son vías para el

descubrimiento de nuevas opciones biotecnológi-

cas (Rondon-Villarreal and Pinzon-Reyes, 2018).

En los LTPs, una secuencia señal es la respon-

sable de dirigir el péptido hacia la membrana cito-

plasmática, donde es llevada en el extremo N por

una aminopeptidasa, y el péptido maduro se expor-

ta al espacio intercelular, donde ejerce su actividad

biológica (Pagnussat et al., 2012). El cnLTP maduro

tiene una sustitución conservada (T-S), además de

dos sustituciones semiconservadas (E-S, N-S). Se ha

informado que la conservación del sitio de fosfori-

lación de S (que podría ser intercambiado por T o E

fosforilables) sería uno de los residuos clave para el

LAGRANJA:Revista de Ciencias de la Vida 41(1) 2025:118-126.

Artículo cientíﬁco/Scientiﬁc paper

BIOTECNOLOGÍA Portela Dussán, D., Estupiñan Torres, S. y Lopez-Pazos, S.

plegamiento de la proteína (Pearlman et al., 2011).

La presencia de la cavidad hidrofóbica es esencial

en la familia de los LTPs, ya que permite la unión

y transferencia de lípidos, por ejemplo, un LTP de

trigo que tenía una cavidad hidrofóbica capaz de

atraer prostaglandina B2 y movilizarla entre frac-

ciones microsomales y mitocondrias. La cavidad

hidrofóbica de los LTP puede unirse a ácidos grasos

saturados (12–19 átomos de carbono), ácidos gra-

sos insaturados de diferentes longitudes de cadena

(16–18 átomos de carbono) y geometría de insatura-

ción, lisolípidos (14–16 átomos de carbono) y ácido

jasmónico (Melnikova et al., 2016; Tassin-Moindrot

et al., 2000).

Los LTPs se dividen en dos grupos según su

peso molecular y conformación estructural: (i) tipo

1 (9-10 kDa), que están formados por cuatro alfa-

hélices y se caracterizan por tener actividad inhibi-

toria sobre ﬁtopatógenos; (ii) tipo 2 (7,0 kDa), que

también están formados por cuatro alfa-hélices, pe-

ro no muestran actividad inhibitoria sobre los pató-

genos de las plantas (Finkina et al., 2016). El cnLTP

pertenece al tipo 1 de los LTPs, en particular por su

peso molecular (9.8 kDa) y sus cuatro alfa-hélices.

Los LTPs tienen actividad biológica contra bacterias

y hongos como Clavibacter michiganensis, P. solana-

cearum, P. syringae, Alternaria brassicola, Ascochyta pi-

si, Colletotrichum lindemuthianum, F. solani, F. grami-

nearum, F. culmorum, F. oxysporum, Botrytis cinerea,

Sclerotinia sclerotiorum, Verticillium dahliae (Finkina

et al., 2016). Las pruebas de antagonismo indica-

ron un efecto inhibitorio del AWF de C. nobile so-

bre R. solani, por ejemplo, se ha evaluado la activi-

dad antimicrobiana de los aceites de C. nobile sobre

Penicillium sp. y Aspergillus sp. (Sharifzadeh et al.,

2016). La localización de un LTP en la pared celu-

lar y su externalización hacia el espacio intercelular

por una secuencia señal sugiere su presencia en el

ﬂuido apoplástico, como se ha evidenciado en Ara-

bidopsis thaliana,B. oleracea,Ricinus communis yVig-

na unguiculata (Missaoui et al., 2022). Se aislaron dos

LTPs (IWFI e IWFI2) del ﬂuido de lavado intercelu-

lar de Beta vulgaris con actividad antifúngica sobre

Cercospora beticola, demostrando su presencia en el

AWF (Nielsen et al., 1996). I-TASSER puede indicar-

nos cómo el cnLTP interactúa con componentes ce-

lulares; por ejemplo, el cnLTP puede unirse quími-

camente al ácido palmítico, ya que este constituye

el 30% de todos los fosfolípidos (Carta et al., 2017).

5 Conclusiones

Este proyecto exploró el problema de la identiﬁca-

ción y caracterización de nuevos AMPs de C. nobile.

Se encontraron características relevantes del cnLTP

(por ejemplo, la cavidad hidrofóbica o los puentes

disulfuro); de igual forma, se analizó su actividad

sobre R. solani. Finalmente, las plantas medicinales

como C. nobile pueden ser una fuente interesante de

AMPs para ser utilizados en Biotecnología, ya que

poseen claves para la síntesis mejorada de nuevas

moléculas o moléculas optimizadas, creando condi-

ciones para su adaptación.

Agradecimientos

Este trabajo fue ﬁnanciado por la Universidad An-

tonio Nariño (proyecto 2022207) y la Universidad

Colegio Mayor de Cundinamarca (Acuerdo 081 de

2020).

Contribución de los autores

DDPD; Conceptualización, investigación, trata-

miento de datos, visualización, escritura del borra-

dor original. SMET; Administración del proyecto.

SALP; Conceptualización, investigación, adminis-

tración del proyecto, tratamiento de datos, visua-

lización, escritura del borrador original, escritura-

revisión y edición.

Referencias

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